汽车不开电瓶会跑电吗泳配的胶会很软，不知道什么原因

来源：蜘蛛抓取(WebSpider) 时间：2015-07-29 03:10 标签： 雅迪豪华超跑电摩飓风
胶跑了会熔解是怎么回事(电泳,电泳槽,缓冲液,加样孔)
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[胶跑了会熔解是怎么回事(电泳,电泳槽,缓冲液,加样孔)] 六一厂DYCP-31BM的电泳槽，胶大小6×6cm，电压50-60v，电泳时间35-45min，发现加样孔以上的部位经常会被热熔了，一直找不出原因，我用的缓冲液是TAE。请大家指点，谢谢！ 关键词:[电泳槽 电泳 加样孔 缓冲液]…
六一厂DYCP-31BM的电泳槽，胶大小6×6cm，电压50-60v，电泳时间35-45min，发现加样孔以上的部位经常会被热熔了，一直找不出原因，我用的缓冲液是TAE。请大家指点，谢谢！
看看你电泳时的电流吧，如果电流太大（一般超过100mA），电泳液就会很热，胶就容易熔，也会对电泳的效果有影响。电泳过热一般与缓冲液的离子量有关，离子太多，导致电流过大，产热就过多。解决的方法有：1.选择合适的缓冲液，注意离子浓度。1×TAE和0.5×TBE均可，我们用0.5×TBE为缓冲液，稳压120V，电流只有30-60mA。2.如果稳压电泳，电流太大，可改成稳流电泳，一般100mA以下，就可以控制过热。3.加冰浴冷却降温，就不会熔胶了。4.电泳液用了几次以后，离子会增多，电泳热量会升高，要及时更换电泳液。以上方法请根据你的实际情况选用。电泳时的电流也不太大啊，一般电流是40-50mA，我用的电泳槽是DYCP-31BM，新鲜配制的TAE跑也是接近40mA，可是跑久一点就会熔。但是有的时候又不会，没个准。会不会是电泳槽的问题，我在另外一间实验室跑，100V电压，跑完胶都发烫也不熔，搞不懂真的很奇怪，没遇过这样的事。我也不知道是什么原因，只能尽量帮你找原因了：1.你的糖胶浓度是多少，是用几乘的缓冲液配的？是不是胶的浓度太大，或配胶的缓冲液太浓（我们用0.5×TBE）。2.糖的品种是否合适，是不是错用了融点过低的琼脂糖。3.电泳槽用久了，会残留很多的沉淀，把槽子刷一下，看能不能好点。4.预先将电泳放4度冷却，然后冰浴下（或加冰袋）电泳。我也只能想到这些，希望能有帮助。楼上的朋友提了不少好的建议，收获不小，我再班门弄斧，多说两句把，现在问题还没解决的话，考虑应该是在电泳过程中产生了大量的离子，原因在于琼脂糖，建议尽量使用高纯度的琼脂糖制品. 另外，如果跑的是ＲＮＡ样品的话，还要注意：1.RNA样品极易分解，操作时注意戴上手套，并应严格防止RNase的污染．2.配制好的RNA电泳用样品应立即使用，不得长期保存．用的是6×6cm的胶，在别人实验室跑的时候用的是他们的电泳槽，比我自己的DYCP-31BM的大，缓冲液用1×TAE，在他们那儿怎么跑都不熔，在自己实验室跑的就不行了，是不是缓冲液不能重复使用？？缓冲液可以重复使用，使用次数根据情况，一般5-10次，如果缓冲液离子多了，电流太大了，就应更换。电泳槽一般应该没什么问题，我们用的也是国产槽，效果和BIO-RAD的一样。胶的大小问题不大，重要的是浓度和和品质。不知道你们都用哪产的琼脂糖，我用的是博亚的琼脂糖我们用的是TaKaRa的琼脂糖，效果不错。
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DNA电泳时配胶的时候用错了溶液， 用的50倍TAE ，电泳槽中是1倍的。电泳过程中DNA和MARKER都跑不动。
请高手指教是什么原理？
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1.选择合适的Marker2.配胶的缓冲液与电泳缓冲液要是同一种,且浓度一致（1倍）3.点样时要加入loading buffer,并注意,不要将样点到点样孔之外（飘样）,也不要将胶戳漏（漏样）4.根据片段大小,及电泳检测目的,选择合适的电压及电泳时间5.EB染色.可选择制胶时加入EB（要在溶玩胶后,且温度至室温时（用手握住制胶容器,不烫手即可））；或电泳结束后,将胶放入EB溶液中染色.
这是我做病毒检测实验试剂盒的说明书部分，看是否对你有帮助：
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