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《动物生理学B》实验教学大纲
教学单位：畜牧兽医学院
课程名称：动物生理学B
英文名称：Animal Physiology
课程代码：
课程类别：学科基础课
课程性质：必修课
学 时 数：课程70学时，实验20学时
课程学分：3.5学分
开课学期：第四学期
面向专业：动物医学、动物医学（公共卫生）、动物科学、动物科学（实验动物）专业
一、实验课程教学目的与任务
《动物生理学B》实验课程从属于动物机能学研究方法，是动物医学、动物医学（公共卫生）、动物科学、动物科学（实验动物）等专业的一门专业必修课，通过本课程的学习，理解动物生理学实验研究有关方法和基本原理，掌握动物生理学实验的基本操作技能。主要内容包括生理实验基本技术及生物机能实验系统学习，蛙坐骨神经腓肠肌标本制作及神经干动作电位引导，血液凝固及红细胞脆性实验，心血管活动的神经体液调节，消化道平滑肌生理特性观察，尿生成的影响因素，大脑皮层运动机能定位和去大脑僵直，反射弧的分析和反射时测定。使学生掌握动物生理学研究中常用的基本方法和实验操作技能，提高学生的动手操作能力，为学生后续课程学习及开展科学研究打下良好基础。
二、实验教学基本要求
1. 能够熟练掌握常规实验动物手术操作的方法、生物机能实验系统的使用方法及常规生理指标的观测与记录。
2. 能够融合实验原理、实验方法及生物电产生机制、心血管活动调节和尿生成的过程等理论知识对相关的实验结果进行分析、判断、归纳与综合。掌握通过实验进行动物生理学研究的基本方法。
3.掌握生理实验项目的基本原理、现象的观测以及原理分析，并能正确写出实验报告。
三、学生应掌握的实验技术及基本技能
1、掌握动物生理实验常规仪器和常用实验动物的麻醉、固定、组织分离、常规手术等基本实验技术的操作。
2、掌握动物生理学实验常用标本的制备和某些生理指标测定的方法。
3、掌握刺激的种类与施加刺激的方法、药物的给药方法及使用剂量。
四、实验项目内容、学时分配和每组人数
生理实验基本技术及生物机能实验系统学习
学习生理学实验准备知识，动物麻醉方法、动脉套管技术、气管套管技术、瘘管技术，生物机能实验系统的使用方法
蛙坐骨神经-腓肠肌标本制作
学习制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法
神经肌肉综合实验
观察不同刺激所引发的不同形式的肌肉收缩，引导神经干的复合动作电位，进行神经干绝对不应期、传导速度等的测定。
反射弧的分析和反射时测定
通过对脊蛙的屈肌反射的分析，探讨反射弧的完整性与反射活动的关系，掌握反射时的测定方法，了解刺激强度和反射时的关系。
大脑皮层运动机能定位和去大脑僵直
通过电刺激兔大脑皮层不同区域，观察相关肌肉收缩的活动，了解皮层运动区与肌肉运动的定位关系及其特点，观察去大脑僵直现象，证明中枢神经系统有关部位对肌紧张有调控作用。
心血管活动的神经体液调节
学习应用压力换能器直接测定家兔动脉血压的急性实验方法并观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响。
血液凝固及红细胞脆性实验
学习测定红细胞渗透脆性的方法，以血液凝固时间作为指标，了解对血液凝固影响的因素，加深对生理止血过程的理解。
消化道平滑肌的生理特性
学习离体器官灌流的一种方法，了解哺乳动物离体肠段的一般生理特性。
尿生成的影响因素
学习测量动物尿流量的急性实验方法，研究几种神经、体液因素对动脉血压和尿量的影响。
五、实验教材及主要参考书：
教材：［1］ &柳巨雄王玮 主编，动物生理学实验指导，吉林大学畜牧兽医学院自印，2006.03
参考教材：［1］马恒东主编周定刚主审，生理学实验教程，四川科技出版社，2004.09
［2］赵秩千,王雨若主编，生理学实验指导，人民卫生出版社，2005.10
［3］朱祖康,王艳玲主编，家畜生理学实验指导，农业科技出版社，2005.03
［4］杨秀平主编，动物生理实验，高等教育出版社，2004.09
六、考核要求、考核方式及成绩评定标准
实验课成绩评定强调全面性与全程性，包括每次实验操作和报告撰写。以实验报告、出勤、课堂表现综合考核给出实验成绩。考核办法一般是根据不同的教学内容布置不同的课堂作业，根据不同的内容制定不同的评分标准，采用现场打分并公示，实验课出勤率及课内表现占10%，实验报告（书面）（包括书写规范性、完整性及实验数据的正确性）占90%。综合评定成绩不合格者必须重修本课。
七、制订人：王&玮
八、审核人：柳巨雄&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&& &&日&期：2009年11月13日
九、学院审定记录：
本实验教学大纲已经学院教学委员会审核通过。
&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&&& 教学院长签字：
吉林大学畜牧兽医学院实验项目卡
实验教学中心名称：动物科技实验教学中心&&&&&&&&&&&&&&&&&&& 实验室名称：动物机能学实验室
说明：1、课程编号可从本专业的课程计划中查找，实验项目编号为课程编号+2位顺序号。
2、项目卡各栏可根据内容进行调整。超出1页的请双面打印。
任课教师(签名)：&&& &&&&&&&&&专业负责人(签名)：&& &&&&&&&&主管院长(签名)：&&&&&&&&&&&&&&& &
填表日期：2009&年 11&月&13 日
吉林大学畜牧兽医学院实验项目卡
实验教学中心名称：动物科技实验教学中心&&&&&&&&&&&&&&&&&& 实验室名称：动物机能学实验室
说明：1、课程编号可从本专业的课程计划中查找，实验项目编号为课程编号+2位顺序号。
2、项目卡各栏可根据内容进行调整。超出1页的请双面打印。
任课教师(签名)：&& &&&&&&&&专业负责人(签名)：&& &&&&&&&&主管院长(签名)：&&&&&&&&&&&&&&& &
填表日期：2009&年 11&月&13 日
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实验教学中心名称：动物科技实验教学中心&&&&&&&&&&&&&&&&&& 实验室名称：动物机能学实验室
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任课教师(签名)：&& &&&&&&&&专业负责人(签名)：&& &&&&&&&&主管院长(签名)：&&&&&&&&&&&&&&& &
填表日期：2009&年 11&月&13 日
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实验教学中心名称：动物科技实验教学中心&&&&&&&&&&&&&&&&&& 实验室名称：动物机能学实验室
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任课教师(签名)：&& &&&&&&&专业负责人(签名)：&&& &&&&&&&&主管院长(签名)：&&&&&&&&&&&&&&& &
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实验教学中心名称：动物科技实验教学中心 &&&&&&&&&&&&&&&&&&实验室名称：动物机能学实验室
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&&网友评论
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联系电话：6
邮编：（130062）地址：吉林省长春市西安大路5333号家兔动脉血压的神经、体液调节
00:00:00&&&来源：&&&评论：&&
[目的要求]：1、学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法．2、观察神经，体液因素对心血管活动的影响．[基本原理]：在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦—主动脉弓压力感受性反射尤为…
[目的要求]：
1、学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法．
2、观察神经，体液因素对心血管活动的影响．
[基本原理]：
在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦&主动脉弓压力感受性反射尤为重要。此反射既可使升高的血压降下来，又可使降低的血压升高，固有血压缓冲反射之称谓。家兔的主动脉神经在解剖上独成一支，易于分离与观察其作用。
本实验是应用液导系统直接测定动脉血压。即由动脉插管与压力传感器连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统，将动脉插管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过封闭的液导系统传递到压力传感器，并由计算机采集记录下来。
[动物与器械]：家兔、麻醉箱，兔手术台，常用手术器械，止血钳（4把）、眼科镊、支架、双凹夹、压力传感器，保护电极，气管插管，动脉插管、动脉夹、三通管、注射器（1ml、5ml、20ml），乳胶管，20%～25%氨基甲酸乙酯、肝素（200U/ml），肾上腺素（1：5000），乙酰胆碱（1：10000），纱布、棉球、生理盐水，生物机能实验系统．
[方法与步骤]：
1、实验仪器的准备
打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的&实验项目&中找出&家兔血压的调节&实验。
2、连通液导系统并制压
3、动物准备
（1）麻醉：家兔称重，由耳缘缓慢注射20％氨基甲酸乙脂5ml／kg。
（2）固定：将家兔，用剪毛剪将颈部和剑突部的被毛剪去即可手术。
（3）手术：，用止血钳分离皮下结缔组织，．颈部神经与颈总动脉位于气管外侧，用止血钳先将血管神经束腹面的肌肉和结缔组织分离，再用左手拇指和食指轻轻捏住分离的肌肉和皮肤，稍向外翻，即可将血管神经束，然后用弯头止血钳分离颈动脉约４厘米，．（注意：再分离颈总动脉及穿线时，切勿损伤与其伴行的神经；在颈总动脉近甲状腺处有甲状腺前动脉，分离时应稍靠其下，以免损伤）用同样方法分离另一侧颈总动脉，穿线备用．轻轻提起右侧颈总动脉下的备用线，．识别准确后，用．顺序由细到粗，神经分离2厘米，即。
（4）气管插管法：用止血钳由颈部正中线将肌肉结缔组织分离，．在气管下方用镊子穿一线，打一活结，在喉头下2－3厘米处的上，将气管插管向心方向中并用线结扎，并将多余的，以免滑脱。
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心血管的活动还受到许多体液因素的调节。肾上腺素(epinephrine)和去甲肾上腺素是其中两种主要的调节因素，肾上腺素对α和β受体都有激动作用，可使心跳加快加强，心输出量增加；它对血管的影响要看作用的血管壁上哪一类受体占优势，一般来说，在整体情况下，小剂量肾上腺素主要引起体内血液重分配，对总外周阻力影响不大，但大剂量的肾上腺素亦可使外周阻力明显升高。…
【目的和原理】&
心脏和血管的活动受神经、体液和自身调节机制的调节。神经调节是指中枢神经系统通过反射调节心血管的活动，各种内外感受器的传入信息进入心血管中枢后，经过中枢的整合处理，改变了交感和副交感传出神经的紧张性活动，进而改变心输出量和外周阻力，使动脉血压得到调节。支配心脏的交感神经兴奋时，末梢释放去甲肾上腺素(NE)，激活心肌膜上的b1受体，使心率加快，心肌收缩力加强，心内兴奋传导加速，从而使心输出量增加；支配心脏的迷走神经兴奋时未稍释放乙酰胆碱(Ach)，激活心肌膜上的M受体，引起心率减慢，心房肌收缩力减弱，房室间传导速度减慢，从而使心输出量减少。支配血管的植物神经主要是交感缩血管神经，它兴奋时末梢释放的去甲肾上腺素与血管平滑肌细胞膜上的受体结合，使平滑肌收缩，血管口径变小，外周阻力增大，同时由于容量血管收缩，促进静脉回流，心输出量亦增加。
&&&&心血管的活动还受到许多体液因素的调节。肾上腺素(epinephrine)和去甲肾上腺素是其中两种主要的调节因素，肾上腺素对&和&受体都有激动作用，可使心跳加快加强，心输出量增加；它对血管的影响要看作用的血管壁上哪一类受体占优势，一般来说，在整体情况下，小剂量肾上腺素主要引起体内血液重分配，对总外周阻力影响不大，但大剂量的肾上腺素亦可使外周阻力明显升高。去甲肾上腺素主要激活&受体，所以其作用主要是引起外周血管广泛收缩，通过增加外周阻力而使动脉血压升高，对心脏的直接作用较小，而且在外源性给予时常因明显的升压作用而引起反射性心率下降。
&&&&本实验以动脉血压为指标，观察整体情况下一些神经体液因素对心血管活动的调节。
【实验材料】&&
家兔；信号处理系统、血压换能器、塑料动脉插管、活动双凹夹、试管夹、铁支架、三通管、双极保护电极、兔手术台、哺乳动物手术器械、注射器（lm1，2m1，10m1）、有色丝线、纱布、脱脂棉；20%氨基甲酸乙酯、0.5%肝素生理盐水、NS、1:10 000去甲肾上腺素、1：10 000肾上腺素、1:10 000乙酰胆碱。
【实验步骤】
&&&&1.仪器装置
&&&&（1）血压换能器&&将血压换能器头端的两个小管分别与三通管连接，其中一个三通管连接塑料动脉插管，旋动三通管的旋柄，使换能器腔通过动脉插管与大气相通；用注射器将肝素生理盐水通过另一三通管缓慢注入换能器和动脉插管内，将换能器和动脉插管内的空气排尽，随即旋动旋柄，将该三通管关闭（注意：注入肝素生理盐水前应保证换能器通过动脉插管与大气相通，否则注入肝素生理盐水时将会使换能器内压力剧升而损坏换能器）。然后将换能器的输出线接至前置放大器压力通道的输入接口。
&&&&（2）打开微机SMUP-PC系统，选择&心血管活动的神经体液调节&项目。扫描速度约2s/p～5s/p，必要时可根据波形进行调节。刺激的推荐参数：刺激减压神经 电压5～10v、刺激频率20～50Hz、 脉冲宽度0.2ms、刺激时间3～5s；刺激迷走神经 电压10～20V、刺激频率20～100Hz、脉冲宽度0.2ms 、刺激时间3～5s。
&&&&2.手术
&&&（1）麻醉&&动物称重后，用20%氨基酸乙酯5ml/Kg由兔耳缘静脉缓慢注入，注射过程中注意观察动物肌张力、呼吸频率及角膜反射的变化，防止麻醉过深。麻醉完后可用一动脉夹将针头固定，保留在耳缘静脉内，针头内抽入一根针灸毫针以防止出血和针头内凝血，实验中每次注射药物时，拨出毫针即可进行注射，以避免多次静脉穿刺。
&&&（2）动物固定&&将麻醉好的动物仰卧位固定于兔手术台上。颈部放正，必要时可在颈部下方垫一小垫（或10～20ml注射器），将颈部垫高，以利于手术。
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